通过毛囊器官培养观察表皮生长因子(egf)对人头皮毛囊生长的影响 。方法 用williamse无血清培养基进行人头皮毛囊游离培养,分为2组,egf组(43根)和对照组(43根) 。结果 egf20μg/l组在加药后1~3d毛干平均生长0.22mm/d,对照组平均生长0.16mm/d,两组差异有显著性(p<0.05),egf对毛囊生长有更明显的促进作用 。但egf组毛囊于培养的第4~6天即出现退行期的形态改变并发生扭曲,毛干停止生长,对照组于培养第10天后才发生形态变化 。组织学上,培养第10天egf组毛囊下部外毛根鞘增厚,杵状结构形成,而对照组仍为生长期形态 。3h-亮氨酸掺入实验显示egf组毛囊上皮中的放射活性(370c/min)高于对照组(271.14c/min)(p<0.05),而毛干中的放射活性(173.19c/min)与对照组(158.49c/min)无明显差异 。结论 egf对毛囊的生长有促进作用,主要是促进毛囊上皮的生长,并且诱导毛囊提前由生长期进入退行期 。
文章插图
毛发生长周期的调节是一个复杂的生理生化过程,该过程尚不完全清楚 。现有的研究表明在毛囊的发生和生长过程中,表皮与间质间的相互作用是十分重要的,而这种相互作用可能是通过可弥散的分子,细胞与细胞间相互作用和细胞外基质介导的[1,2] 。表皮生长因子(egf)可能参与毛发生长与生长周期的调节[3,4] 。我们采用游离毛囊培养和3h-亮氨酸掺入实验探讨egf对人头皮毛囊的生长、形态和蛋白质合成的影响 。
材料和方法
(一)材料:
1.标本来源:18~35岁新鲜尸体头皮 。
2.仪器:解剖显微镜(北京泰克仪器有限公司),倒置显微镜(olympus),co2孵箱(queue) 。
3.培养基与试剂:williamse培养基(gibco)加谷氨酰胺2mmol/l,hepes2mmol/l,氢化可的松10μg/l,牛胰岛素(sigma)10mg/l,转铁蛋白(sigma)10mg/l,亚硒酸钠(北京朝阳中联化工试剂厂)10μg/l,青霉素10×104u/l,链霉素100mg/l 。egf(sigma)20μg/l 。
(二)方法:
1.毛囊器官培养:参照philpott[5]的方法 。选生长期毛囊分置于24孔板中,每孔1根,williamse无血清培养基中培养 。于培养第1天选取形态完好、生长速度与生理生长速度相似的毛囊(即1d内生长约0.3mm以上的毛囊)86根,分成两组:egf组和对照组各43根,egf组培养基中加入egf(20μg/l) 。每组各16根毛囊每天在倒置显微镜下观察毛囊形态并测量毛囊长度 。游离培养的毛囊两端的最远距离记为毛囊长度,从毛干基底到毛干游离端记为毛干长度 。
2.组织学检查:培养第10天,egf组和对照组各取2根毛囊,10%福尔马林固定24h,石蜡包埋,切片,he染色,观察毛囊组织学形态 。
3.3h-亮氨酸掺入:参照harmon[6]的方法,于加入egf培养24h后,egf组和对照组各选取25根毛囊,每5根置于1个孔中,加入3h-亮氨酸2μci/ml,继续培养48h后将毛囊移至1ml离心管中,分别用pbs和5%三氯醋酸(tca)洗2次,蒸馏水洗1次,然后加入1ml0.3nnaoh37℃孵化18h 。离心取上清液,测定可溶于碱蛋白(asp)部分,即毛囊上皮成分的放射活性 。沉淀主要为未溶解的毛干,用0.3nnaoh洗4次,然后与0.5mol/lnabh4+1nnaoh50℃孵化48h,待毛干完全溶解,加入适量盐酸中和,用以测定毛干蛋白(hfp)中的放射活性 。使用液闪计数仪进行放射活性测定 。
5.统计学分析:采用spss统计软件进行t检验 。
结果
(一)毛囊生长情况:(图1)egf(20μg/l)组于加药后第1~3天毛干平均生长0.22mm/d,对照组平均生长0.16mm/d,两组比较差异有显著性(p<0.05) 。egf组毛干第4天后生长速度明显减慢,第5天时61.5%停止生长,平均总生长天数为7.6d,而对照组直至第10天后还在继续生长,平均总生长天数为14d 。egf组毛囊和毛干的延长不完全一致,毛囊保持较快的延长速度至第6天,然后生长减慢,第8天时61.5%停止生长,平均生长天数为9.8d,培养10d总生长长度为1.28mm,比毛干(0.82mm)多(p<0.05) 。而对照组毛囊与毛干的生长基本是一致的,培养第1~3天平均生长速度分别为0.15mm和0.16mm,培养10d平均总生长长度分别为0.96mm和1.02mm 。
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